Основные темы НИР, финансируемые из государственного бюджета в 2018-2020 гг.

17916 просмотров
13.03.2018
Распечатать

Приводятся списки избранных публикаций сотрудников за 5 лет, предшествующих году утверждения тем.

«Структурно-функциональная характеристика биополимеров и надмолекулярных комплексов ризосферных бактерий, определяющих формирование ассоциативного симбиоза как формы адаптации к условиям обитания» (рук. к.б.н. Ю.П. Федоненко)

1. Kamnev A.A., Tugarova A.V. Sample treatment in Mössbauer spectroscopy for protein-related analyses: nondestructive possibilities to look inside metal-containing biosystems // Talanta. – 2017. – Vol. 174. – P. 819-837. - DOI: 10.1016/j.talanta.2017.06.057.
2. Tugarova A.V., Kamnev A.A. Proteins in microbial synthesis of selenium nanoparticles // Talanta. – 2017. – Vol. 174. – P. 539-547. - DOI: 10.1016/j.talanta.2017.06.013.
3. Kamnev A.A., Perfiliev Yu.D., Kulikov L.A., Tugarova A.V., Kovács K., Homonnay Z, Kuzmann E. Cobalt(II) complexation with small biomolecules as studied by 57Co emission Mössbauer spectroscopy // Spectrochim. Acta, Part A: Mol. Biomol. Spectrosc. – 2017. – Vol. 172. – P. 77-82. – DOI: 10.1021/jp408359p.
4. Kamnev A.A., Mamchenkova P.V., Dyatlova Yu.A., Tugarova A.V. FTIR spectroscopic studies of selenite reduction by cells of the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp7 and the formation of selenium nanoparticles // J. Mol. Struct. – 2017. – Vol. 1140. – P. 106-112. - DOI: 10.1016/j.molstruc.2016.12.003.
5. Sigida E.N., Fedonenko Yu.P., Shashkov A.S., Zdorovenko E.L., Ignatov V.V., Knirel Yu.A. Structural studies of the O-speciﬁc polysaccharide from detergent degrading bacteria Pseudomonas putida TSh-18 // Carbohydr. Res. – 2017. – Vol. 448. – P. 1-5.- DOI: 10.1016/j.carres.2017.05.013.
6. Kovács K., Kamnev A.A., Pechoušek J., Tugarova A.V., Kuzmann E., Machala L., Zbořil R., Homonnay Z., Lázár K. Evidence for ferritin as dominant iron-bearing species in the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp7 provided by low-temperature-in-field Mössbauer spectroscopy // Anal. Bioanal. Chem. – 2016. – Vol. 408(6). – P. 1565-1571. DOI: - 10.1007/s00216-015-9264-3.
7. Евстигнеева С.С., Сигида Е.Н., Федоненко Ю.П., Коннова С.А., Игнатов В.В. Структурные особенности капсульных и О-полисахаридов бактерий Azospirillum brasilense Sp245 при изменении условий культивирования // Микробиология. – 2016. – Т. 85, № 6. – С. 643-651. - DOI: 10.7868/S0026365616060094.
8. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Shashkov A.S., Arbatsky N.P., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Elucidation of a masked repeating structure of the O-specific polysaccharide of the halotolerant soil bacteria Azospirillum halopraeferens Au4 // Beilstein J. Org. Chem. – 2016. – Vol. 12. – P. 636-642 - DOI: 10.3762/bjoc.12.62.
9. Yegorenkova I.V., Tregubova K.V., Burygin G.L., Matora L.Y., Ignatov V.V. Assessing the efficacy of co-inoculation of wheat seedlings with the associative bacteria Paenibacillus polymyxa 1465 and Azospirillum brasilense Sp245 // Can. J. Microbiol. – 2016. – Vol. 62(3). – P. 279-285. DOI: - 10.1139/cjm-2015-0647.
10. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Shashkov A.S., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structure of the polysaccharides from the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense Jm125A2 // Carbohydr. Res. – 2015. – Vol. 416. – P. 37-40. – DOI: 10.1021/jp408359p.
11. Федоненко Ю.П., Сигида Е.Н., Коннова С.А., Игнатов В.В. Cтруктура и серология О-антигенов азотфиксирующих ризобактерий рода Azospirillum // Изв. АН. Сер. хим. – 2015, № 5. – С. 1024-1031.
12. Tugarova A.V., Vetchinkina E.P., Loshchinina E.A., Burov A.M., Nikitina V.E., Kamnev A.A. Reduction of selenite by Azospirillum brasilense with the formation of selenium nanoparticles // Microb. Ecol. – 2014. – Vol. 68. – P. 495-503. - DOI: 10.1007/s00248-014-0429-y.
13. Tugarova A.V., Burov A.M., Burashnikova M.M., Kamnev A.A. Gold(III) reduction by the rhizobacterium Azospirillum brasilense with the formation of gold nanoparticles // Microb. Ecol. – 2014. – Vol. 67. – P. 155-160. - DOI: 10.1007/s00248-013-0329-6.
14. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Shashkov A.S., Grinev V.S., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structural studies of the polysaccharides from the lipopolysaccharides of Azospirillum brasilense Sp246 and SpBr14 // Carbohydr. Res. – 2014. – Vol. 398. – P. 40-44. - DOI:10.1016/j.carres.2014.05.008.
15. Сигида Е.Н., Федоненко Ю.П., Здоровенко Э.Л., Бурыгин Г.Л., Коннова С.А., Игнатов В.В. Характеристика липополисахаридов бактерий рода Azospirillum, отнесённых к серогруппе II // Микробиология. – 2014. – Т. 83, № 4. – C. 416-425. - DOI: 10.7868/S0026365614040156.
16. Каневский М.В., Коннова С.А., Бойко А.С., Федоненко Ю.П., Сигида Е.Н., Игнатов В.В. Влияние флавоноидов на состав гликополимеров поверхности Azospirillum lipoferum Sp59b // Микробиология. – 2014. – Т. 83, № 2. – С. 143-151.
17. Bashan Y., Kamnev A.A., de-Bashan L.E. Tricalcium phosphate is inappropriate as a universal selection factor for isolating and testing phosphate-solubilizing bacteria that enhance plant growth: a proposal for an alternative procedure // Biol. Fertil. Soils. – 2013. – Vol. 49. – P. 465-479. - DOI: 10.1007/s00374-012-0737-7.
18. Bashan Y., Kamnev A.A., de-Bashan L.E. A proposal for isolating and testing phosphate-solubilizing bacteria that enhance plant growth // Biol. Fertil. Soils. – 2013. – Vol. 49. – P. 1-2. - DOI 10.1007/s00374-012-0756-4.
19. Kamnev A.A., Tugarova A.V., Kovács K., Kuzmann E., Biró B., Tarantilis P.A., Homonnay Z. Emission (57Co) Mössbauer spectroscopy as a tool for probing speciation and metabolic transformations of cobalt(II) in bacterial cells // Anal. Bioanal. Chem. – 2013. – Vol. 405. – P. 1921-1927.- DOI:10.1007/s00216-012-6370-3.
20. Kamnev A.A. Analytical molecular and biomolecular spectroscopy: Basics and applications // Spectrochim. Acta, Part A: Mol. Biomol. Spectrosc. – 2013. – Vol. 100. – P. 1-2. – DOI: 10.1016/j.saa.2012.10.035.
21. Kamnev A.A., Tugarova A.V., Selivanova M.A., Tarantilis P.A., Polissiou M.G., Kudryasheva N.S. Effects of americium-241 and humic substances on Photobacterium phosphoreum: bioluminescence and diffuse reflectance FTIR spectroscopic studies // Spectrochim. Acta Part, A: Mol. Biomol. Spectrosc. – 2013. – Vol. 100. – P. 171-175. - DOI:10.1016/j.saa.2012.06.003.
22. Sigida E.N., Fedonenko Yu.P., Shashkov A.S., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structural studies of the O-specific polysaccharide(s) from the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense type strain Sp7 // Carbohydr. Res. – 2013. – Vol. 380. – P. 76-80.- DOI: 10.1016/j.carres.2013.07.013.
23. Fedonenko Yu.P., Burygin G.L., Sigida E.N., Popova I.A., Surkina A.K., Zdorovenko E.L., Konnova S.A. Immunochemical characterization of the capsular polysaccharide from the Azospirillum irakense KBC1 // Curr. Microbiol. – 2013. – Vol. 67. – P. 234-239. – DOI: 10.1007/s00284-013-0346-1.
24. Sigida E.N., Fedonenko Yu.P., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Shashkov A.S., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structure of repeating units of a polysaccharide(s) from the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense SR80 // Carbohydr. Res. – 2013. – Vol. 371. – P. 40-44. – DOI: 10.1016/j.carres.2013.01.005.
25. Yegorenkova I.V., Tregubova K.V., Ignatov V.V. Paenibacillus polymyxa rhizobacteria and their synthesized exoglycans in interaction with wheat roots: colonization and root hair deformation // Curr. Microbiol. – 2013. – Vol. 66. – P. 481-486. – DOI: 10.1007/s00284-012-0297-y.

«Физиолого-биохимические и иммунохимические исследования реакций бактериальных, растительных и животных клеток на биотические и абиотические воздействия» (рук. д.х.н., проф. С.Ю. Щеголев)

1. Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Gold Nanoparticles in Biomedical Applications. – Boca Raton: CRC Press, 2017. – 332 p. – ISBN 978-1-138-56074-1.
2. Дыкман Л.А., Щеголев С.Ю. Взаимодействие растений с наночастицами благородных металлов // Сельхоз. биол. – 2017. Т. – 52, № 1. С. – 13-24. – DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.13rus.
3. Широков А.А., Буданова А.А., Буров А.М., Хлебцов Б.Н., Красов А.И., Щеголев С.Ю., Матора Л.Ю. Иммуноэлектронно-микроскопическое исследование поверхности клеток штаммов Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2017. – Т. 86, № 4. – С. 476-482. - DOI: 10.7868/S0026365617040140.
4. Селиванов Н.Ю., Селиванова О.Г., Соколов О.И., Соколова М.К., Соколов А.О., Богатырев В.А., Дыкман Л.А. Влияние наночастиц золота и серебра на рост суспензионной культуры клеток Arabidopsis thaliana // Рос. нанотех. – 2017. – Т. 12, № 1-2. – С. 90-96. - DOI: 10.21515/1990-4665-127-018.
5. Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Immunological properties of gold nanoparticles // Chem. Sci. – 2017. – Vol. 8, No. 3. – P. 1719-1735. - DOI: 10.1039/c6sc03631g.
6. Крицкая Т.А., Евсеева Н.В., Бурыгин Г.Л., Кашин А.С., Щеголев С.Ю. Использование Azospirillum brasilense Sp245 для повышения эффективности микроклонального размножения смолевки меловой (Silene cretacea Fisch. ex Spreng.) // Биотехнология – 2017. – Т. 33, №1. – С. 72-79. – DOI: 10.1016/0234-2758-2017-33-1-72-79.
7. Бурыгин Г.Л., Попова И.А., Каргаполова К.Ю., Ткаченко О.В., Матора Л.Ю., Щеголев С.Ю. Бактериальный изолят из ризосферы картофеля (Solanum tuberosum L.), идентифицированный как Ochrobactrum lupini IPA7.2 // Сельхоз. биол. – 2017. – Т. 52, № 1. – С. 105-115. - DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.105rus.
8. Бурыгин Г.Л., Сигида Е.Н., Федоненко Ю.П., Хлебцов Б.Н., Щеголев С.Ю. Применение и развитие метода динамического рассеяния света для исследования надмолекулярных структур в водных растворах бактериальных липополисахаридов // Биофизика. – 2016. – Т. 61, вып. 4. – С. 647-659. – DOI: 10.1134/S0006350916040059
9. Щеголев С.Ю. Разработка и визуализация больших массивов данных в таксономических и эволюционных исследованиях живой природы // Изв. Сарат. ун-та. Новая серия. Серия Физика. – 2016. – Т. 16, вып. 3. – С. 145-167. - DOI: 10.18500/1817-3020-2016-16-3-145-167.
10. Соколов О.И., Селиванов Н.Ю., Богатырев В.А., Селиванова О.Г., Великородная Ю.И., Почепцов А.Я., Филатов Б.Н., Щеголев С.Ю., Дыкман Л.А. Получение и изучение каталитической активности высокоочищенной бутирилхолинэстеразы человека, конъюгированной с наночастицами золота // Докл. Акад. наук. – 2016. – Т. – 468, № 6. – С. 713-715. – DOI: 10.7868/S0869565216180286.
11. Shchyogolev S.Yu. Molecular taxonomy and the evolution theory in light of emerging bioinformatic and cosmological data // Journal of Bioinformatics and Genomics. – 2016. – Vol. 1–1. – DOI:10.18454/jbg.2016.1.1.3.
12. Dykman L.A., Staroverov S.A., Fomin A.S., Panfilova E.V., Shirokov A.A., Bucharskaya A.B., Maslyakova G.N., Khlebtsov N.G. Gold nanoparticle-aided preparation of antibodies to α-methylacyl-CoA racemase and its immunochemical detection // Gold Bull. – 2016. – Vol. 49, No. 3-4. – P. 87-94. - DOI:10.1007/s13404-016-0186-4.
13. Dykman L.A., Staroverov S.A., Mezhenny P.V., Fomin A.S., Kozlov S.V., Volkov A.A., Laskavy V.N., Shchyogolev S.Y. Use of a synthetic foot-and-mouth disease virus peptide conjugated to gold nanoparticles for enhancing immunological response // Gold Bull. – 2015. – Vol. 48, No. 1-2. – P. 93-101. - DOI: 10.1007/s13404-015-0165-1.
14. Tkachenko O., Evseeva N., Boikova N., Matora L., Burygin G., Lobachev Yu., Shchyogolev S. Improved potato microclonal reproduction with the plant-growth promoting rhizobacteria Azospirillum // Agron. Sustainable Dev. – 2015. – Vol. 35. – P. 1167–1174. - DOI: 10.1007/s13593-015-0304-3.
15. Бойкова Н.В., Ткаченко О.В., Евсеева Н.В., Матора Л.Ю., Бурыгин Г.Л., Щеголев С.Ю. Создание ассоциации in vitro картофеля с бактериями рода Azospirillum // Аграрный научный журнал. – 2015. – №7. – С.3-7.
16. Широков А.А., Красов А.И., Селиванов Н.Ю., Бурыгин Г.Л., Щеголев С.Ю., Матора Л.Ю. Иммунохимическое выявление бактерий рода Azospirillum в почве с помощью родоспецифичных антител // Микробиология. – 2015. – Т. 84, № 2. – С. 244-249. - DOI: 10.7868/S0026365615020135.
17. Гулий О. И., Соколова М.К., Соколов О.И., Игнатов О.В. Изменение морфологии корневой системы пшеницы при инокуляции Azospirillum brasilense Sp7 и бактериофагом ФAb-Sp7 // Сельхоз. биол. – 2015. – Т. 50, №3. – С.315-322. – DOI: 10.15389/agrobiology.2015.3.315rus.
18. Староверов С.А., Дыкман Л.А. Использование наночастиц золота для получения антител к туберкулину, иммуноанализа микобактерий и вакцинации животных // Рос. нанотех. – 2013. – Т. 8, № 11-12. – С. 118-122. – DOI: 10.1134/S1995078013060165.
19. Khlebtsov N.G., Bogatyrev V.A., Dykman L.A., Khlebtsov B.N., Staroverov S.A., Shirokov A.A., Matora L.Y., Khanadeev V.A., Pylaev T.E., Tsyganova N.A., Terentyuk G.S. Analytical and theranostic applications of gold nanoparticles and multifunctional nanocomposites // Theranostics. – 2013. – Vol. 3, No. 3. – P. 167-180. - DOI:10.7150/thno.5716.
20. Щеголев С.Ю. Современные взгляды на эволюцию: о роли горизонтального переноса генов // Изв. вузов «ПНД». – 2013. – Т. 21, № 4. – С. 43-76.

«Изучение детоксикационного потенциала растительно-микробных ассоциаций и грибов в условиях техногенного загрязнения» (рук. д.б.н., проф. О.В. Турковская)

1. Дубровская Е.В., Позднякова Н.Н., Голубев С.Н., Гринёв В.С., Турковская О.В. Пероксидазы из корней люцерны: каталитические свойства и участие в деградации полициклических ароматических углеводородов // Физиол. растений. – 2017. – Т. 64, № 2. – С. 116-126. – DOI: 10.7868/S0015330317010055.
2. Дубровская Е.В., Позднякова Н.Н., Гринёв В.С., Муратова А.Ю., Голубев С.Н., Бондаренкова А.Д., Турковская О.В. Доминирующая форма катионной пероксидазы из корней сорго веничного // Физиол. растений. – 2016. – Т. 63, № 3. − С. 359-371. ¬ DOI: 10.7868/S0015330316030052.
3. Дубровская Е.В., Позднякова Н.Н., Муратова А.Ю., Турковская О.В. Изменение фитотоксичности полициклических ароматических углеводородов в процессе их микробной деградации // Физиол. растений. – 2016. – Т. 63, № 1. – С. 180-187. DOI: 10.7868/S001533031601005X.
4. Дубровская Е.В., Поликарпова И.О., Муратова А.Ю., Позднякова Н.Н., Чернышова М.П., Турковская О.В. Изменение ростовых и физиолого-биохимических параметров сорго веничного (Sorghum bicolor (L.) Moench) в присутствии фенантрена // Физиол. растений. – 2014. – Т. 61, № 4. – С. 565-573. – DOI: 10.1134/S1021443717010058.
5. Нешко А.А., Гринёв В.С., Крючкова Е.В., Федоненко Ю.П., Любунь Е.В., Турковская О.В. Биосорбция Cu(II) экзополисахаридом Enterobacter cloacae K7 // Изв. Сарат. ун-та. Новая сер. Сер. Химия. Биология. Экология. – 2015. - Т. 15, вып. 1. - С. 61-67.
6. Пайдулова Ю.А., Турковская О.В. Фиторемедиационный потенциал некоторых высших водных растений водоёмов Саратовской области // Поволж. экол. журн. – 2015. – № 3. – С. 294-300.
7. Панченко Л.В., Муратова А.Ю., Дубровская Е.В., Голубев С.Н., Березуцкий М.А., Турковская О.В. Атлас растений-фиторемедиантов. – Саратов: Научная книга, 2015. – 560 с.
8. Позднякова Н.Н., Чернышова М.П., Гринёв В.С., Ландесман Е.О., Королёва О.В., Турковская О.В. Деградация флуорена и флуорантена базидиомицетом Pleurotus ostreatus // Прикл. биохим. микробиол. – 2016. – Т. 52, № 6. – С. 590-598. (Pozdnyakova N.N., Chernyshova M.P., Grinev V.S., Landesman E.O., Koroleva O.V., Turkovskaya O.V. Degradation of fluorene and fluoranthene by the basidiomycete Pleurotus ostreatus // Appl. Biochem. Microbiol. – 2016. – Vol. 52, No 6. – P. 621-628. – DOI: 10.1134/S0003683816060132).
9. Declerck S., Willems A., van der Heijden M., Varese G., Turkovskaya O., Evtushenko L., Ivshina I., Desmeth Ph. PERN: an EU–Russia initiative for rhizosphere microbial resources // Trends Biotechnol. – 2015. – Vol. 33, No 7. – P. 377-380. – DOI: 10.1016/j.tibtech. 2015.03.005.
10. Dubrovskaya E., Pozdnyakova N., Golubev S., Muratova A., Grinev V., Bondarenkova A., Turkovskaya O. Peroxidases from root exudates of Medicago sativa and Sorghum bicolor: catalytic properties and involvement in PAH degradation // Chemosphere. – 2017. – Vol. 169. – P. 224-232. – DOI: 10.1016/j.chemosphere.2016.11.027.
11. Kryuchkova Y.V., Burygin G.L., Gogoleva N.E., Gogolev Y.V., Chernyshova M.P., Makarov O.E., Fedorov E.E., Turkovskaya O.V. Isolation and characterization of a glyphosate-degrading rhizosphere strain, Enterobacter cloacae K7 // Microbiol. Res. – 2014. – Vol. 169, iss. I. – P. 99-105.
12. Lyubun Y.V., Pleshakova E.V., Mkandawire M., Turkovskaya O.V. Diverse effects of arsenic on selected enzyme activities in soil–plant–microbe interactions // J. azard. Mater. – 2013. – Vol. 262. – P. 685-690.
13. Muratova A., Dubrovskaya E., Golubev S., Grinev V., Chernyshova M., Turkovskaya O. The coupling of the plant and microbial catabolisms of phenanthrene in the rhizosphere of Medicago sativa // J. Plant Physiol. – 2015. – Vol. 188. – P. 1-8. – DOI: 10.1016/j.jplph.2015.07.014.
14. Muratova A., Lyubun Y., German K., Turkovskaya O. Effect of cadmium stress and inoculation with a heavy-metal-resistant bacterium on the growth and enzyme activity of Sorghum bicolor// Environ. Sci. Pollut. Res. – 2015. – Vol. 22. – P. 16098-16109. – DOI: 10.1007/s11356-015-4798-7.
15. Muratova A., Pozdnyakova N., Makarov O., Baboshin M., Baskunov B., Myasoedova N., Golovleva L., Turkovskaya O. Degradation of phenanthrene by the rhizobacterium Ensifer meliloti // Biodegradation. – 2014. – Vol. 25, No 6. – P. 787-795. – DOI: 10.1007/s10532-014-9699-9.
16. Panchenko L., Muratova A., Turkovskaya O. Comparison of the phytoremediation potentials of Medicago falcata L. and Medicago sativa L. in aged oil-sludge-contaminated soil // Environ. Sci. Pollut. Res. – 2017. – Vol. 24. – P. 3117-3130. – DOI: 10.1007/s11356-016-8025-y.
17. Pozdnyakova N., Makarov O., Chernyshova M., Turkovskaya O., Jarosz-Wilkolazka A. Versatile peroxidase of Bjerkandera fumosa: substrate and inhibitor specificity // Enzyme Microb. Technol. – 2013. – Vol. 52. – P. 44-53.
18. Pozdnyakova N., Makarov O., Chernyshova M., Turkovskaya O., Jarosz-Wilkolazka A. Versatile peroxidase of Bjerkandera fumosa: substrate and inhibitor specificity // Enzyme Microb. Technol. – 2013. – Vol. 52. – P. 44-53.
19. Pozdnyakova N., Wlizlo K., Szalapata K., Jarosz-Wilkolazka A., Turkovskaya O. Ch. 1: Ligninolytic peroxidases: Unique properties and biotechnological potential // Peroxidases: Biochemical Characteristics, Functions and Potential Applications / Ed. L. Bogaert, N. Coppens. – NY: Nova Sci. Publ., 2013. – P. 1-54. – ISBN: 978-1-62808-261-6.
20. Pozdnyakova N.N., Jarosz-Wilkolazka A., Polak J., Graz M., Turkovskaya O.V. Decolourisation of anthraquinone- and anthracene-type dyes by versatile peroxidases from Bjerkandera fumosa and Pleurotus ostreatus D1 // Biocatal. Biotransform. – 2015. – Vol. 33, No 2. – P. 69-80. – DOI: 10.3109/10242422.2015.1060227.

«Генетический анализ вклада гликополимеров и жгутиков в социальную жизнь альфапротеобактерий Azospirillum brasilense» (рук. д.б.н., проф. Е.И. Кацы)

1. Tugarova A.V., Scheludko A.V., Dyatlova Y.A., Filip'echeva Y.A., Kamnev A.A. FTIR spectroscopic study of biofilms formed by the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp245 and its mutant Azospirillum brasilense Sp245.1610 // J. Mol. Struct. – 2017. – Vol. 1140. – P. 142-147. – DOI: 10.1016/j.molstruc.2016.12.063.
2. Petrova L.P., Prilipov A.G., Katsy E.I. Detection of putative polysaccharide biosynthesis genes in Azospirillum brasilense strains from serogroups I and II // Russ. J. Genet. – 2017. – Vol. 53, No 1. – P. 39-48. – DOI: 10.1134/S1022795416110107.
3. Filip’echeva Y.A., Shelud’ko A.V., Prilipov A.G., Burygin G.L., Telesheva E.M., Yevstigneyeva S.S., Chernyshova M.P., Petrova L.P., Katsy E.I. Plasmid AZOBR_p1-borne fabG gene for putative 3-oxoacyl-[acyl-carrier protein] reductase is essential for proper assembly and work of the dual flagellar system in the alphaproteobacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Can. J. Microbiol. – Publ. online 15.11.2017. – DOI: 10.1139/cjm-2017-0561.
4. Filip’echeva Yu., Shelud’ko A., Prilipov A., Telesheva E., Mokeev D., Burov A., Petrova L., Katsy E. Chromosomal flhB1 gene of the alphaproteobacterium Azospirillum brasilense Sp245 is essential for correct assembly of both constitutive polar flagellum and inducible lateral flagella // Folia Microbiol. – Publ. online 15.08.2017. – DOI: 10.1007/s12223-017-0543-6.
5. Shumilova E.M., Shelud’ko A.V., Filip’echeva Y.A., Evstigneeva S.S., Ponomareva E.G., Petrova L.P., Katsy E.I. Changes in cell surface properties and biofilm formation efficiency in Azospirillum brasilense Sp245 mutants in the putative genes of lipid metabolism mmsB1 and fabG1 // Microbiology. – 2016. – Vol. 85, No 2. – P. 172-179. – DOI: 10.1134/S002626171602017X.
6. Shelud’ko A.V., Filip’echeva Y.A., Shumilova E.M., Khlebtsov B.N., Burov A.M., Petrova L.P., Katsy E.I. Changes in biofilm formation in the nonflagellated flhB1 mutant of Azospirillum brasilense Sp245 // Microbiology. – 2015. – Vol. 84, No 2. – P. 144-151. – DOI: 10.1134/S0026261715010129.
7. Katsy E.I., Petrova L.P. Genome rearrangements in Azospirillum brasilense Sp7 with the involvement of the plasmid pRhico and the prophage ΦAb-Cd // Russ. J. Genet. – 2015. – Vol. 51, No 12. – P. 1165-1171. – DOI: 10.1134/S1022795415110095.
8. Katsy E.I., Prilipov A.G. Insertional mutation in the AZOBR_p60120 gene is accompanied by defects in the synthesis of lipopolysaccharide and calcofluor-binding polysaccharides in the bacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Russ. J. Genet. – 2015. – Vol. 51, No 3. – P. 245-250. – DOI: 10.1134/S1022795415030059.
9. Shelud’ko A.V., Burygin G.L., Filip’echeva Y.A., Belyakov A.E., Shirokov A.A., Burov A.M., Katsy E.I., Shchegolev S.Y., Matora L.Yu. Serological relationships of azospirilla revealed by their motility patterns in the presence of antibodies to lipopolysaccharides // Microbiology. – 2014. – Vol. 83, No 1-2. – P. 102-109. – DOI: 10.1134/S0026261714020179.
10. Scortichini M., Katsy E.I. Common themes and specific features in the genomes of phytopathogenic and plant-beneficial bacteria // Plasticity in Plant-Growth-Promoting and Phytopathogenic Bacteria / Ed. E.I. Katsy. – New York: Springer, 2014. – P. 1-26. – DOI: 10.1007/978-1-4614-9203-0_1.
11. Katsy E.I. Plasmid rearrangements and changes in cell-surface architecture and social behavior of Azospirillum brasilense // Plasticity in Plant-Growth-Promoting and Phytopathogenic Bacteria / Ed. E.I. Katsy. – New York: Springer, 2014. – P. 81-97. – DOI: 10.1007/978-1-4614-9203-0_5.
12. Katsy E.I. (ed.) Plasticity in Plant-Growth-Promoting and Phytopathogenic Bacteria. – New York: Springer, 2014. – 208 p. – DOI: 10.1007/978-1-4614-9203-0.
13. Shelud’ko A.V., Tugarova A.V., Il’chukova A.V., Varshalomidze O.E., Antonyuk L.P., El’-Registan G.I., Katsy E.I. Negative effect of alkylresorcinols on motility of rhizobacteria Azospirillum brasilense // Microbiology. – 2013. – Vol. 82, No 4. – P. 434-438. – DOI: 10.1134/S0026261713040103.
14. Kovtunov E.A., Shelud’ko A.V., Chernyshova M.P., Petrova L.P., Katsy E.I. Mutants of bacterium Azospirillum brasilense Sp245 with Omegon insertion in mmsB or fabG genes of lipid metabolism are defective in motility and flagellation // Russ. J. Genet. – 2013. – Vol. 49, No 11. – P. 1107-1111. – DOI: 10.1134/S1022795413110112.
15. Kovtunov E.A., Petrova L.P., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Transposon insertion into a chromosomal copy of flhB gene is concurrent with defects in the formation of polar and lateral flagella in bacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Russ. J. Genet. – 2013. – Vol. 49, No 8. – P. 881-884. –DOI: 10.1134/S1022795413080061.

«Изучение генов, контролирующих взаимодействие мембран гамет кукурузы с целью создания новых технологий биоинженерии для современной селекции» (рук. д.б.н. М.И. Чумаков)

1. Volokhina I., Gusev Y., Mazilov S., Moiseeva Y., Chumakov M. Computer evaluation of VirE2 protein complexes for ssDNA transfer ability // Comput. Biol. Chem. – 2017. – Vol. 68. – Р. 64-70. – DOI: 10.1016/j.compbiolchem.2017.01.016.
2. Волохина И.В., Моисеева Е.М., Гусев Ю.С., Гуторова О.В., Чумаков М.И. Анализ генов, контролирующих процесс слияния гамет, у гаплоиндуцирующей линии кукурузы ЗМС-П // Онтогенез. – 2017. – № 2. – С. 134-139. – DOI: 10.1134/S1062360417020096.
3. Волохина И.В., Великов В.А., Моисеева Е.М., Чумаков М.И. Анализ распространения и выживания агробактерий после инокуляции пестичных нитей кукурузы // Микробиология. – 2016. – Т. 85. – С. 66-72.
4. Волохина И.В., Моисеева Е.М., Гусев Ю.С., Чумаков М.И. Технологии агробактериальной трансформации генеративных клеток растений с использованием механизма двойного оплодотворения // Трансгенные растения: технологии создания, биологические свойства, применение, биобезопасность: сб. науч. тр., Москва, 16-21 нояб. 2016 г. – С. 30-34.
5. Кулуев Б.Р., Вершинина З.Р., Князев А.В., Чемерис Д.А., Баймиев Ан.Х., Чумаков М.И., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. «Косматые» корни растений – важный инструментарий для исследователей и мощная фитохимбиофабрика для производственников // Биомика. – 2015. – Т. 7, № 2. – С. 70-120.
6. Chumakov M.I., Gusev Yu.S., Moiseeva E.M., Volokhina I.V. Self-assembled ssDNA-VirE2 nano-complexes can incorporate into animal cells by the VirE2-dependent way // 6th Int. Conf. «The nanoparticles and nanostructured coatings microcontainers: technology, properties and applications», Saratov, Russia, 21-24 May 2015. – Saratov: Saratov State Univ., 2015. – P. 64-65.
7. Moiseeva Y.M., Velikov V.A., Volokhina I.V., Gusev Yu.S., Yakovleva O.S., Chumakov M.I. Agrobacterium-mediated transformation of maize with antisense suppression of the proline dehydrogenase gene by an in planta method // Br. Biotech. J. – 2014. – Vol. 4. – P. 116-125.
8. Чумаков М.И. Использование методов биоинформатики для изучения взаимодействия агробактерий с растениями и животными // Методы компьютерной диагностики в биологии и медицине – 2014: сб. науч. тр., Саратов, 5-7 нояб. 2014 г. – С. 283-285. – ISBN 978-5-91879-455-5.
9. Гусев Ю.С., Чумаков М.И. Анализ структуры и свойств белка VirE2 агробактерий методами биоинформатики // Методы компьютерной диагностики в биологии и медицине – 2014: сб. науч. тр., Саратов, 5-7 нояб. 2014 г. – С. 285-288. – ISBN 978-5-91879-455-5.
10. Мазилов С.И., Чумаков М.И. Поиск фрагментов агробактериальных генов в геномах растений и животных in silico // Методы компьютерной диагностики в биологии и медицине – 2014: сб. науч. тр., Саратов, 5-7 нояб. 2014 г. – С. 288-290. – ISBN 978-5-91879-455-5.
11. Gusev Yu.S., Mazilov S.I., Volokhina I.V., Chumakov M.I. In silico evaluation of the integration of Agrobacterium VirE2 protein into a lipid membrane // FEBS. – 2013. – Vol. 280, suppl. 1. – P. 542. – DOI: 10.1111/febs.12340.
12. Чумаков М.И. Белковый аппарат, реализующий горизонтальный перенос Т-ДНК из агробактерий в эукариотические клетки (обзор) // Биохимия. – 2013. – Т. 78, вып. 12. – С. 1670-1683. – DOI: 10.1134/S000629791312002X.
13. Волохина И.В., Гусев Ю.С., Чумаков М.И. Исследование накопления олигонуклеотидов животными клетками, опосредованное белком VirE2 // Нанотехнологии и охрана здоровья. – 2013. – Т. 5, № 1(14). – С. 32-39.
14. Чумаков М.И. Моделирование белков и их комплексов (на примере белка VirE2): метод. пособие. – Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 2013. – 52 с.
15. Чумаков М.И. Теория и практика агробактериальной трансформации растений: метод. пособие. – Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 2013. – 31 с.

«Изучение гликопротеинов и низкомолекулярных физиологически активных метаболитов в адаптации и коммуникации бактерий и грибов» (рук. д.б.н., проф. В.Е. Никитина)

1. Tsivileva O.M., Perfileva A.I. Selenium compounds biotransformed by mushrooms: not only dietary sources, but also toxicity mediators // Curr. Nutrit. Food Sci. – 2017. – Vol. 13, No 2. – P. 82-96. - DOI:10.2174/1573401313666170117144547.
2. Vetchinkina E.P., Loshchinina E.A., Vodolazov I.R., Kursky V.F., Dykman L.A. Nikitina V.E. Biosynthesis of nanoparticles of metals and metalloids by basidiomycetes. Preparation of gold nanoparticles by using purified fungal phenol oxidases // Appl. Microbiol. Biotechnol. – 2017. – Vol. 101, No 3. – Р. 1047-1062. - DOI: 10.1007/s00253-016-7893-x.
3. Vetchinkina E.P., Gorshkov V.Yu., Ageeva M.V., Gogolev Yu.V., Nikitina V.E. Description of the brown mycelial mat as an essential morphological structures of the basidiomycete Lentinus edodes // Int. J. Med. Mushrooms. – 2017. – Vol. 19, No 9. – Р. 817-827. - DOI: 10.1615/IntJMedMushrooms.2017024280.
4. Vetchinkina E.P., Kupryashina M.A., Gorshkov V.Yu., Ageeva M.V., Gogolev Yu.V., Nikitina V.E. Alteration in the ultrastructural morphology of mycelial hyphae and the dynamics of transcriptional activity of lytic enzyme genes during basidiomycete morphogenesis// J. Microbiol. – 2017. – Vol. 55, No 4. – P. 280-288. - DOI:10.1007/s12275-017-6320-z.
5. Kupryashina M.A., Vetchinkina E.P., Nikitina V.E. Biofabrication of discrete silver and gold nanoparticles by the bacterium Azospirillum brasilense: mechanistic aspects // J. Cluster Sci. – 2017. – Vol. 28, No 3. – P. 1179-1190. - DOI: 10.1007/s10876-016-1111-y.
6. Alen’kina S.А., Nikitina V.Е. Change in the ratio of the activities of different types of proteases and their inhibitors in plant roots exposed to Azospirillum lectins // J. Plant Growth Regul. – 2017. – Vol. 36. – P. 522-527. - DOI: 10.1007/s00344-016-9658-2.
7. Nikitina V.E., Loshchinina E.A., Vetchinkina E.P. Lectins from mycelia of basidiomycetes // Int. J. Mol. Sci. (Review). – 2017. – Vol. 18, No 7. – P. 1334-1350. - DOI:10.3390/ijms18071334.
8. Tsivileva O.M., Nguyen P.T., Vu N.L., Yurasov N.A., Chernyshova M.P., Petrov A.N., Galushka V.V., Markin A.V., Koftin O.V. Vietnamese Ganoderma: growth, peculiarities, low-molecular composition compared to European and Siberian strains // Turk. J. Bot. – 2016. – Vol. 40, No 3. – P. 269-286. - DOI: 10.3906/bot-1410-15.
9. Лощинина Е.А., Никитина В.Е. Участие NO-синтазной сигнальной системы в ответе на действие абиотических стрессорных факторов у базидиомицетов Lentinula edodes и Grifola frondosa // Микробиология. – 2016. – Т. 85, № 2. – С. 154-161. - DOI: 10.7868/S0026365616020130.
10. Vetchinkina E.P., Shirokov A.A., Bucharskaya A.B., Navolokin N.A., Prilepskii A.Yu., Burov A.M., Maslyakova G.N., Nikitina V.E. Anti-tumor activity of extracts from medicinal basidiomycetes // Int. J. Med. Mushrooms. – 2016. – Vol. 18, No 11. – P. 955-964. - DOI: 10.1615/IntJMedMushrooms.v18.i11.10.
11. Ветчинкина Е.П., Лощинина Е.А., Курский В.Ф., Никитина В.Е. Биологический синтез наночастиц селена и германия ксилотрофными базидиомицетами // Прикл. биохим. микробиол. – 2016. – Т. 52, № 1. – С. 103-114. - DOI: 10.7868/S055510991601013X.
12. Купряшина М.А., Ветчинкина Е.П., Никитина В.Е. Биосинтез серебряных наночастиц с участием внеклеточной Мn-зависимой пероксидазы азоспирилл // Прикл. биохим. микробиол. – 2016. – Т. 52, № 4. – С. 377-382. - DOI: 10.7868/S0555109916040103.
13. Цивилева O.M., Нгуен T.Ф., Ву Л.Н., Чернышова М.П., Юрасов Н.А., Петров А.Н., Кофтин О.В., Верхотуров В.В. Липидные компоненты пигментированного и глубинного мицелия Ganoderma разных климатических зон // Изв. вузов. Прикл. химия биотехнол. – 2015. – № 3 (14). – С. 37-47.
14. Купряшина М.А., Петров С.В., Пономарева Е.Г., Никитина В.Е. Лигнинолитическая активность бактерий рода Azospirillum и Niveispirillum // Микробиология. – 2015. – Т. 84, No 6. – С. 691-696. - DOI:10.7868/S0026365615060051.
15. Ветчинкина Е.П., Горшков В.Ю., Агеева М.В., Гоголев Ю.В., Никитина В.Е. Активность и экспрессия генов лакказы, тирозиназы, глюканазы и хитиназы в процессе морфогенеза Lentinus edodes // Микробиология. – 2015. – Т. 84, № 1. – С. 49-58. - DOI: 10.7868/S0026365615010164.
16. Аленькина С.А., Никитина В.Е. Влияние лектинов азоспирилл на активность протеолитических ферментов и их ингибиторов в корнях проростков пшеницы // Микробиология. – 2015. – Т. 84, No 5. – С. 553-560. - DOI:10.7868/S002636561505002X.
17. Alen'kina S.A., Bogatyrev V.A., Matora L.Y., Sokolova M.K., Chernyshova M.P., Trutneva K.A., Nikitina V.E. Signal effects of the lectin from the associative nitrogen-fixing bacterium Azospirillum brasilense Sp7 in bacterial-plant root interactions // Plant Soil. – 2014. – No 381. – P. 337-349. - DOI: 10.1007/s11104-014-2125-6.
18. Аленькина С.А., Петрова Л.П., Соколова М.К., Чернышева М.П., Трутнева К.А., Богатырев В.А., Никитина В.Е. Сравнительная оценка индуктивного воздействия различных по антигенным свойствам лектинов азоспирилл на сигнальные системы корней проростков пшеницы // Микробиология. – 2014. – Т. 83, № 3. – С. 336-345. - DOI: 10.7868/S0026365614030021.
19. Vetchinkina E.P., Loshchinina E.A., Burov A.M., Dykman L.A., Nikitina V.E. Enzymatic formation of gold nanoparticles by submerged culture of the basidiomycete Lentinus edodes // J. Biotechnol. – 2014. – Vol. 182-183. – P. 37-45. - DOI: 10.1016/j.jbiotec.2014.04.018.
20. Купряшина М.А., Ветчинкина Е.П., Буров А.М., Пономарева Е.Г., Никитина В.Е. Биосинтез золотых наночастиц бактериями Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2014. – Т. 83, № 1. – С. 41-48. - DOI: 10.7868/S0026365614010078.
21. Tsivileva О.M., Uchaeva I.M., Pankratov A.N., Kudryavtseva T.N., Markovich Y.D., Nikitina V.Е. First estimations of plant acridone alkaloid implemented in mushroom mycelium growth // J. Agric. Sci. Technol. – 2013. – Vol. 12, No 12A. – P. 1026-1031.
22. Vetchinkina E.P., Loshchinina E.A., Kursky V.F, Nikitina V.E. Reduction of organic and inorganic selenium compounds by the edible medicinal basidiomycete Lentinula edodes and the accumulation of elemental selenium nanoparticles in its mycelium // J. Microbiol. – 2013. – Vol. 51, No 6. – P. 1-7. - DOI: 10.1007/s12275-013-2689-5.
23. Ветчинкина Е.П., Буров А.М., Агеева М.В., Дыкман Л.А., Никитина В.Е. Биологический синтез золотых наночастиц ксилотрофным базидиомицетом Lentinula edodes // Прикл. биохим. микробиол. – 2013. – Т. 49, № 4. – С. 402-408. - DOI: 10.7868/S0555109913040132.
24. Ветчинкина Е.П., Пономарёва Е.Г., Гоголева Ю.В., Никитина В.Е. Тирозиназы подвижных штаммов бактерий рода Azospirillum // Микробиология. – 2013. – Т. 82, № 2. – С. 157-161. - DOI: 10.7868/S0026365613020171.
25. Аленькина С.А., Трутнева К.А., Никитина В.Е. Изменение содержания салициловой кислоты, активности фенилаланин-аммиаклиазы и каталазы в корнях проростков пшеницы при воздействии лектинов азоспирилл // Изв. РАН. Сер. биол. – 2013. – № 6. – С. 760-764. - DOI: 10.7868/S0002332913060027.

«Золотые и гибридные плазмонные наноструктуры для аналитических и биомедицинских применений» (рук. д.-ф.-м.н., проф. Н.Г. Хлебцов)

1. Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Gold nanoparticles in biomedical applications. – Boca Raton: CRC Press, 2017. – 332 p. – ISBN 978-1-138-56074-1.
2. Matteini P., Cottat M., Tavanti F., Panfilova E., Scuderi M., Nicotra G., Menziani M. C., Khlebtsov N., de Angelis M., Pini R. Site-selective surface-enhanced Raman detection of proteins // ACS Nano. – 2017. – Vol. 11. – P. 518-526. - DOI: 10.1021/acsnano.6b07523. (IF=13.942, Q1 by WoS).
3. Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Immunological properties of gold nanoparticles // Chem. Sci. – 2017. – Vol. 8. – P. 1719. - DOI: 10.1039/C6SC03631G. (IF=8.668, Q1 by WoS).
4. Khlebtsov N.G., Khlebtsov B.N. Optimal design of gold nanomatryoshkas with embedded Raman reporters // J. Quant. Spectrosc. Radiat. Transfer. – 2017. – Vol. 190. – P. 89-102. – DOI: 10.1016/j.jqsrt.2017.01.027. (IF=2.419 Q2 by WoS, Q1 by Scopus SJR).
5. Khlebtsov B., Pylaev T., Khanadeev V., Bratashov D., Khlebtsov N. Quantitative and multiplex dot-immunoassay using gap-enhanced Raman tags // RSC Adv. – 2017. – Vol. 7. – P. 40834-40841. - DOI: 10.1039/C7RA08113H. (IF=3.108, Q2 by WoS, Q1 by Scopus SJR).
6. Jin X., Khlebtsov B.N., Khanadeev V.A., Khlebtsov N.G., Ye J. Rational design of ultra-bright SERS probes with embedded reporters for bioimaging and photothermal therapy // ACS Appl. Mater. Interfaces. – 2017. – Vol. 9. – P. 30387-30397. - DOI: 10.1021/acsami.7b08733. (IF= 7.504, Q1 by WoS).
7. Bhushan B., Khanadeev V., Khlebtsov B., Khlebtsov N., Gopinath P. Impact of albumin based approaches in nanomedicine: imaging, targeting and drug delivery // Adv. Colloid Interface Sci. – 2017. – Vol. 246. – P. 13-39. - DOI: 10.1016/j.cis.2017.06.012. (IF= 7.223, Q1 by WoS).
8. Khlebtsov B., Khanadeev V., Khlebtsov N. Surface enhanced Raman scattering inside Au@Ag core/shell nanorods // Nano Res. – 2016. – Vol. 9. – P. 2303-2318. – DOI: 10.1007/s12274-016-1117-7. (IF =7.354, Q1 by WoS).
9. Vanzha E., Pylaev T., Khanadeev V., Konnova S., Fedorova V., Khlebtsov N. Gold nanoparticle-assisted polymerase chain reaction: effects of surface ligands, nanoparticle shape and material // RSC Adv. – 2016. – Vol. 6. – P. 110146-110154. - DOI: 10.1039/C6RA20472D. (IF=3.108, Q2 by WoS, Q1 by Scopus SJR).
10. Khlebtsov B.N., Khlebtsov N.G. Surface morphology of a gold core controls the formation of hollow or bridged nanogaps in plasmonic nanomatryoshkas and their SERS responses // J. Phys. Chem. C. – 2016. – Vol. 120. – P. 15385-15394. – DOI: 10.1016/j.jqsrt.2017.01.027 (IF=4.509, Q1 by WoS).
11. Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Multifunctional gold-based nanocomposites for theranostics // Biomaterials. – 2016. – Vol. 108. – P. 13-34. – 10.1016j/biomaterials.2016.08.040. (IF=8.387, Q1 by WoS).
12. Golubev A.A., Prilepskii A.Y., Dykman L.A., Khlebtsov N.G., Bogatyrev V.A. Colorimetric evaluation of the viability of the microalga Dunaliella salina as a test tool for nanomaterial toxicity // Toxicol. Sci. – 2016. – Vol. 151. – P. 115-125. – DOI: 10.1093/toxsci/kfw023. (IF= 4.081, Q1 by WoS).
13. Khlebtsov B., Tuchina E., Tuchin V., Khlebtsov N. Multifunctional Au nanoclusters for targeted bioimaging and enhanced photodynamic inactivation of Staphylococcus aureus // RSC Adv. – 2015. – Vol. 5. – P. 61639-61649. - DOI: 10.1039/C5RA11713E. (IF=3.84, Q2 by WoS, Q1 by Scopus SJR).
14. Khlebtsov B.N., Khanadeev V.A., Panfilova E.V., Bratashov D.N., Khlebtsov N.G. Gold nanoisland films as reproducible SERS substrates for highly sensitive detection of fungicides // ACS Appl. Mater. Interfaces. – 2015. – Vol. 7. – P. 6518-6529. – DOI: 10.1038/s41598-018-19558-w. (IF=7.504, Q1 by WoS).
15. Хлебцов Н.Г., Дыкман Л.А., Хлебцов Б.Н., Богатырев В.А. Золотые и композитные наночастицы для биомедицинских применений в аналитике и тераностике // Биофизические медицинские технологии / Под ред. А.И. Григорьева, Ю.А. Владимирова. – M: MaxPress, 2015. Т. 2. – С. 6-74. – ISBN 978-5-317-04921-8 [Khlebtsov N.G., Dykman L.A., Khlebtsov B.N., Bogatyrev V.A. Gold and composite nanoparticles for analytical and theranostic applications // Biophysical medical technologies / Ed. by A.I. Grigor’ev, Yu.A. Vladimirov. Moscow: Max Press, 2015. – Vol. 2. – P. 6-74 (in Russian)].
16. Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Uptake of engineered gold nanoparticles into mammalian cells // Chem. Rev. – 2014. – Vol. 114, No 2. – P. 1258-1288. - DOI: 10.1021/cr300441a. (IF=41.298, Q1 by WoS).
17. Terentyuk G., Panfilova E., Khanadeev V., Chumakov D., Genina E., Bashkatov A., Tuchin V., Bucharskaya A., Maslyakova G., Khlebtsov N., Khlebtsov B. Gold nanorods with hematoporphyrin-loaded silica shell for dual-modality photodynamic and photothermal treatment of tumors in vivo // Nano Res. – 2014. – Vol. 7. – P. 325-337. – DOI: 10.1007/s12274-013-0398-3. (IF=7.354, Q1 WoS).
18. Khlebtsov B.N., Khanadeev V.A., Ye J., Sukhorukov G.B., Khlebtsov N.G. Overgrowth of gold nanorods by using a binary surfactant mixture // Langmuir. – 2014. – Vol. 30. – P. 1696-1703. - DOI: 10.1021/la404399n. (IF=4.384, Q1 by WoS).
19. Khanadeev V.А., Khlebtsov B.N., Klimova S.A., Tsvetkov M.Yu., Bagratashvili V.N., Sukhorukov G.B., Khlebtsov N.G. Large-scale high-quality 2D silica crystals: dip-drawing formation and decoration with gold nanorods and nanospheres for SERS analysis // Nanotechnology. – 2014. – Vol. 25, art. 405602. - DOI: 10.1088/0957-4484/25/40/405602 (IF= 3.44, Q1 by WoS).
20. Khlebtsov B., Khanadeev V., Panfilova E., Khlebtsov N. Improved size-tunable synthesis and SERS properties of Au nanostars // J. Nanopart. Res. – 2014. – Vol. 16. – P. 2623. - Khlebtsov B., Khanadeev V., Panfilova E., Khlebtsov N. Improved size-tunable synthesis and SERS properties of Au nanostars // J. Nanopart. Res. – 2014. – Vol. 16. – P. 2623. – DOI: 10.1007/s11051-014-2623-8/ (IF= 2.02, Q2 by WoS, Q1 by Scopus SJR).
21. Khlebtsov B.N., Khanadeev V.A., Khlebtsov N.G. Extinction and extra-high depolarized light scattering spectra of gold nanorods with improved purity and dimension tunability: direct and inverse problems // Phys. Chem. Chem. Phys. – 2014. – Vol. 16. – P. 5710-5722. – DOI: 10.1039/c3cp55414g. (IF=4.123, Q1 by WoS).
22. Khlebtsov N., Bogatyrev V., Dykman L., Khlebtsov B., Staroverov S., Shirokov A., Matora L., Khanadeev V., Pylaev T., Tsyganova N., Terentyuk G. Analytical and theranostic applications of gold nanoparticles and multifunctional nanocomposites // Theranostics. – 2013. – Vol. 3. – P. 167-180. – DOI: 10.7150/thno.5716. (IF=7.806, Q1 by WoS).
23. Khlebtsov B.N., Tuchina E.S., Khanadeev V.A., Panfilova E.V., Petrov P.O., Tuchin V.V., Khlebtsov N.G. Enhanced photoinactivation of Staphylococcus aureus with nanocomposites containing plasmonic particles and hematoporphyrin // J. Biophotonics. – 2013. – Vol. 6. – P. 338-351. – DOI: 10.1002/jbio.201200079. (IF=4.328, Q1 by WoS).
24. Khlebtsov B.N., Khanadeev V.A., Tsvetkov M.Yu., Bagratashvili V.N., Khlebtsov N.G. SERS substrates based on self-assembled PEGylated gold and gold-silver core-shell nanorods // J. Phys. Chem. C. – 2013. – Vol. 117. – P. 23162-23171. - DOI: 10.1021/jp408359p. (IF=4.814, Q1 by WoS).
25. Khlebtsov N.G. T-matrix method in plasmonics: an overview // J. Quant. Spectrosc. Radiat. Transfer. – 2013. – Vol. 123. – P. 184-217. – DOI: 10.1016/j.jqsrt.2014.03.022. (IF=2.419, Q2 by WoS, Q1 by Scopus SJR).

Выполняются научные проекты, поддержанные грантами различных научных фондов (Президента РФ, Российского научного фонда, РФФИ и др.).

Авторизация

Актуальная информация

Обнаружили неточность?

Если Вы нашли ошибку в тексте – выделите её мышью и нажмите Ctrl+Enter